JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Cancer Research

زراعة وتصوير شرائح الورم المخاطي الكاذب البريتوني خارج الجسم الحي من عينات الورم البشري المقطوعة

Published: December 9th, 2022

DOI:

10.3791/64620

1Department of Surgery, University of California

نحن نصف بروتوكولا لإنتاج وثقافة وتصور السرطانات البشرية ، والتي انتشرت إلى الأسطح البريتونية. يتم قطع عينات الورم المقطوعة باستخدام اهتزاز وزراعتها على إدخالات منفذة لزيادة الأوكسجين والقدرة على البقاء ، تليها تحليلات التصوير والمصب باستخدام الفحص المجهري متحد البؤر وقياس التدفق الخلوي.

الورم المخاطي الصفاق الكاذب (PMP) هو حالة نادرة تنتج عن انتشار ورم أولي مخاطي وما ينتج عن ذلك من تراكم الخلايا السرطانية التي تفرز الميوسين في التجويف البريتوني. يمكن أن ينشأ PMP من أنواع مختلفة من السرطانات ، بما في ذلك الزائدة الدودية والمبيض والقولون والمستقيم ، على الرغم من أن أورام الزائدة الدودية هي إلى حد بعيد المسببات الأكثر شيوعا. من الصعب دراسة PMP بسبب (1) ندرته ، (2) نماذج الفئران المحدودة ، و (3) الأنسجة المخاطية اللاخلوية. تسمح الطريقة المعروضة هنا بالتصور والاستجواب في الوقت الفعلي لأنواع الأورام هذه باستخدام شرائح النمط العضوي خارج الجسم الحي المشتقة من المريض في إعداد تظل فيه البيئة المكروية للورم (TME) سليمة. في هذا البروتوكول ، نصف أولا تحضير شرائح الورم باستخدام الاهتزاز والثقافة اللاحقة طويلة الأجل. ثانيا ، نصف التصوير البؤري لشرائح الورم وكيفية مراقبة القراءات الوظيفية للحياة وتصوير الكالسيوم والانتشار المحلي. باختصار ، يتم تحميل الشرائح بأصباغ التصوير ويتم وضعها في غرفة تصوير يمكن تركيبها على مجهر متحد البؤر. يتم استخدام مقاطع الفيديو ذات الفاصل الزمني والصور متحدة البؤر لتقييم الجدوى الأولية والوظائف الخلوية. يستكشف هذا الإجراء أيضا الحركة الخلوية الانتقالية ، وتفاعلات إشارات paracrine في TME. أخيرا ، وصفنا بروتوكول تفكك لشرائح الورم لاستخدامها في تحليل التدفق الخلوي. يمكن استخدام تحليل قياس التدفق الخلوي الكمي للاختبار العلاجي من مقاعد البدلاء إلى السرير لتحديد التغييرات التي تحدث داخل المشهد المناعي ومحتوى الخلايا الظهارية.

الورم المخاطي الصفاق الكاذب (PMP) هو متلازمة نادرة بمعدل حدوث 1 لكل مليون شخص في السنة1. تحدث معظم حالات PMP بسبب النقائل من الأورام الزائدة الدودية. بالنظر إلى أن الفئران ليس لديها ملحق شبيه بالإنسان ، فإن نمذجة هذا النوع من السرطان تظل صعبة للغاية. في حين أن المرض الأساسي غالبا ما يكون قابلا للشفاء عن طريق الاستئصال الجراحي ، فإن خيارات العلاج للمرض النقيلي محدودة. لذلك ، فإن الأساس المنطقي لتطوير نموذج الشريحة العضوية الجديد هذا هو دراسة البيولوجيا المرضية ل PMP. حتى الآن ، لا توجد نماذج عضوية ملحقة يمكن استزراعها بشكل دائم. ومع ذلك ، فقد ثبت أن النموذج الحديث مفيد للاختبار الدوائي للعوامل العلاجية والعلاج المناعي2. ع....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

تم إجراء إزالة الهوية والحصول على جميع الأنسجة بموجب بروتوكول معتمد من IRB في جامعة كاليفورنيا ، سان دييغو.

1. إعداد أنسجة PMP البشرية لمعالجة الأنسجة وزراعتها

  1. نقل أنسجة الورم والتشريح المجهري
    1. تحضير وسائط النقل والثقافة: أكمل 10٪ (v / v) وسائط النسر المعدلة من Dulb.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

باختصار ، يتم الحصول على عينات الورم البشري من PMP بموجب بروتوكول معتمد من IRB. يتم تحضير الأنسجة وتشريحها الدقيقة وتصلبها في قالب أغاروز ليتم قطعه باستخدام اهتزاز (الشكل 1 أ ؛ فيديو 1). بمجرد القطع ، يتم وضع شرائح الأنسجة واستزراعها على أغشية إدخال قابلة للاختراق (

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

تصف هذه المخطوطة تقنية يمكن استخدامها لاستزراع عينات الورم المخاطي الكاذب الصفاق (PMP) البشرية واستجوابها وتحليلها. لقد استخدمنا العديد من المقايسات الوظيفية النهائية لاستجواب البيئة المكروية المناعية للورم ومنصة للاختبار من مقاعد البدلاء إلى السرير.

في حين أن الطريقة عال.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

يود المؤلفون أن يشكروا Kersi Pestonjamasp من المرفق الأساسي للتصوير في مركز مورس للسرطان للمساعدة في منح المجاهر مركز دعم السرطان المتخصص UCSD P30 2P30CA023100. تم دعم هذا العمل أيضا من خلال منحة نشر JoVE (JRW) ، بالإضافة إلى هدايا سخية من ملكية إليزابيث و Ad Creemers ، ومؤسسة Euske Family Foundation ، وصندوق أبحاث سرطان الجهاز الهضمي ، وصندوق أبحاث ورم خبيث بريتوني (AML).

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
1 M CaCl2 solutionSigma21115
1 M HEPES solutionSigmaH0887
1 M MgCl2 solution SigmaM1028
100 micron filterThermoFisher22-363-549
22 x 40 glass coverslipsDaiggerbrandG15972H
3 M KCl solutionSigma60135
5 M NaCl solutionSigmaS5150
ATPγS Tocris 4080
Bovine Serum AlbuminSigmaA2153
Calcein-AM InvitrogenL3224
CD11b Biolegend101228
CD206 Biolegend321140
CD3Biolegend555333
CD4 Biolegend357410
CD45 Biolegend304006
CD8 Biolegend344721
CellTiter-Glo PromegaG9681
DMEM Thermo Fisher11965084
DPBS Sigma AldrichD8537
FBS, heat inactivatedThermoFisher16140071
Fc-block BD Biosciences564220
Fluo-4Thermo FisherF14201
Gentle Collagenase/Hyaluronidase Stem Cell7912
Imaging ChamberWarner InstrumentsRC-26
Imaging Chamber PlatformWarner InstrumentsPH-1
LD-Blue BiolegendL23105
L-Glutamine 200 mMThermoFisher25030081
LIVE/DEAD imaging dyesThermofisherR37601
Nikon Ti microscope NikonIncludes: A1R hybrid confocal scanner including a high-resolution (4096x4096) scanner, LU4 four-laser AOTF unit with 405, 488, 561, and 647 lasers, Plan Apo 10 (NA 0.8), 20X (NA 0.9) dry objectives. 
Peristaltic pump IsamtecISM832C
Propidium IodideInvitrogenL3224
Vacuum silicone greaseSigmaZ273554-1EA

  1. Bevan, K. E., Mohamed, F., Moran, B. J. Pseudomyxoma peritonei. World Journal of Gastrointestinal Oncology. 2 (1), 44-50 (2010).
  2. Votanopoulos, K. I., et al. Appendiceal cancer patient-specific tumor organoid model for predicting chemotherapy efficacy prior to initiation of treatment: A feasibility study. Annals of Surgical Oncology. 26 (1), 139-147 (2019).
  3. Holliday, D. L., et al. The practicalities of using tissue slices as preclinical organotypic breast cancer models. Journal of Clinical Pathology. 66 (3), 253-255 (2013).
  4. Koerfer, J., et al. Organotypic slice cultures of human gastric and esophagogastric junction cancer. Cancer Medicine. 5 (7), 1444-1453 (2016).
  5. Misra, S., et al. Ex vivo organotypic culture system of precision-cut slices of human pancreatic ductal adenocarcinoma. Scientific Reports. 9 (1), 2133 (2019).
  6. Ohnishi, T., Matsumura, H., Izumoto, S., Hiraga, S., Hayakawa, T. A novel model of glioma cell invasion using organotypic brain slice culture. Cancer Research. 58 (14), 2935-2940 (1998).
  7. Seidman, J. D., Elsayed, A. M., Sobin, L. H., Tavassoli, F. A. Association of mucinous tumors of the ovary and appendix. A clinicopathologic study of 25 cases. The Amerian Journal of Surgical Pathology. 17 (1), 22-34 (1993).
  8. Mizuta, Y., et al. Pseudomyxoma peritonei accompanied by intraductal papillary mucinous neoplasm of the pancreas. Pancreatology. 5 (4-5), 470-474 (2005).
  9. Gong, Y., Wang, X., Zhu, Z. Pseudomyxoma peritonei originating from transverse colon mucinous adenocarcinoma: A case report and literature review. Gastroenterology Research and Practice. 2020, 5826214 (2020).
  10. Fleten, K. G., et al. Experimental treatment of mucinous peritoneal metastases using patient-derived xenograft models. Translational Oncology. 13 (8), 100793 (2020).
  11. Kuracha, M. R., Thomas, P., Loggie, B. W., Govindarajan, V. Patient-derived xenograft mouse models of pseudomyxoma peritonei recapitulate the human inflammatory tumor microenvironment. Cancer Medicine. 5 (4), 711-719 (2016).
  12. Jiang, X., et al. Long-lived pancreatic ductal adenocarcinoma slice cultures enable precise study of the immune microenvironment. Oncoimmunology. 6 (7), 1333210 (2017).
  13. Sundstrom, L., Morrison, B., Bradley, M., Pringle, A. Organotypic cultures as tools for functional screening in the CNS. Drug Discovery Today. 10 (14), 993-1000 (2005).
  14. Liu, L., Yu, L., Li, Z., Li, W., Huang, W. Patient-derived organoid (PDO) platforms to facilitate clinical decision making. Journal of Translational Medicine. 19 (1), 40 (2021).
  15. Croft, C. L., Futch, H. S., Moore, B. D., Golde, T. E. Organotypic brain slice cultures to model neurodegenerative proteinopathies. Molecular Neurodegeneration. 14 (1), 45 (2019).
  16. Carr, N. J. New insights in the pathology of peritoneal surface malignancy. Journal of Gastrointestinal Oncology. 12, 216-229 (2021).
  17. Votanopoulos, K. I., et al. Outcomes of repeat cytoreductive surgery with hyperthermic intraperitoneal chemotherapy for the treatment of peritoneal surface malignancy. Journal of the American College of Surgeons. 215 (3), 412-417 (2012).
  18. Weitz, J., et al. An ex-vivo organotypic culture platform for functional interrogation of human appendiceal cancer reveals a prominent and heterogenous immunological landscape. Clinical Cancer Research. 28 (21), 4793-4806 (2022).
  19. Pitoulis, F. G., Watson, S. A., Perbellini, F., Terracciano, C. M. Myocardial slices come to age: an intermediate complexity in vitro cardiac model for translational research. Cardiovascular Research. 116 (7), 1275-1287 (2020).
  20. Habeler, W., Peschanski, M., Monville, C. Organotypic heart slices for cell transplantation and physiological studies. Organogenesis. 5 (2), 62-66 (2009).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved